白樺基因工程育種

目錄
前言
第一篇 白樺抗旱耐鹽基因工程育種
第1章 轉(zhuǎn)BpTCP7基因白樺的抗旱耐鹽性研究 3
1.1 BpTCP家族基因的生物信息學(xué)分析 3
1.1.1 BpTCP基因的特性分析 3
1.1.2 蛋白質(zhì)基本結(jié)構(gòu)域的預(yù)測 3
1.1.3 BpTCP基因氨基酸序列的同源性分析 4
1.1.4 BpTCP基因系統(tǒng)進(jìn)化樹 5
1.2 BpTCP基因在白樺不同組織器官表達(dá)特性 5
1.3 BpTCP7基因啟動子的表達(dá)特性 7
1.3.1 BpTCP7基因啟動子的克隆 7
1.3.2 BpTCP7基因啟動子順式作用元件預(yù)測 7
1.3.3 BpTCP7基因組織部位表達(dá)特性 10
1.3.4 BpTCP7基因干旱及鹽應(yīng)答特性 11
1.4 BpTCP7基因的白樺遺傳轉(zhuǎn)化研究 11
1.4.1 BpTCP7基因植物過表達(dá)載體的構(gòu)建 11
1.4.2 轉(zhuǎn)基因白樺的獲得 13
1.4.3 轉(zhuǎn)基因株系的分子檢測 14
1.5 轉(zhuǎn)BpTCP7基因白樺的抗旱耐鹽性分析 15
1.5.1 NaCl脅迫處理及生理指標(biāo)測定 15
1.5.2 PEG脅迫處理及生理指標(biāo)測定 16
第2章 轉(zhuǎn)BpSPL9基因白樺的抗旱耐鹽性研究 20
2.1 BpSPL家族基因的生物信息學(xué)分析 20
2.1.1 白樺BpSPL基因的特性分析 20
2.1.2 白樺SPL基因的染色體定位分析 21
2.1.3 白樺BpSPL基因氨基酸序列的同源性分析 21
2.1.4 BpSPL基因的系統(tǒng)發(fā)育分析 23
2.2 BpSPL基因在白樺不同組織器官表達(dá)特性 24
2.2.1 BpSPL基因組織部位表達(dá)特性 24
2.2.2 NaCl和PEG脅迫下BpSPL9的應(yīng)答特性 25
2.3 BpSPL9基因的白樺遺傳轉(zhuǎn)化研究 26
2.3.1 植物過表達(dá)載體的構(gòu)建 26
2.3.2 轉(zhuǎn)基因白樺的獲得 29
2.3.3 轉(zhuǎn)基因株系的分子檢測 29
2.4 轉(zhuǎn)BpSPL9基因白樺的抗旱耐鹽性分析 31
2.4.1 轉(zhuǎn)基因植株的耐鹽性分析 31
2.4.2 轉(zhuǎn)基因植株的抗旱性分析 35
第3章 轉(zhuǎn)BpCHS3基因白樺的耐鹽性研究 41
3.1 BpCHS3基因生物信息學(xué)分析 41
3.1.1 BpCHS3基因開放讀碼框和相似性比對 41
3.1.2 BpCHS3氨基酸序列及理化性質(zhì) 41
3.1.3 BpCHS3基因系統(tǒng)進(jìn)化樹 43
3.2 BpCHS3基因的白樺遺傳轉(zhuǎn)化研究 44
3.2.1 植物表達(dá)載體的構(gòu)建 44
3.2.2 BpCHS3基因過表達(dá)株系的獲得 47
3.2.3 白樺BpCHS3基因干擾株系的獲得 49
3.3 轉(zhuǎn)BpCHS3基因白樺的耐鹽性分析 51
3.3.1 轉(zhuǎn)基因白樺組培苗的耐鹽性分析 51
3.3.2 田間盆栽轉(zhuǎn)基因白樺的耐鹽性分析 52
3.4 轉(zhuǎn)BpCHS3基因白樺的葉片花青素含量比較 53
第4章 轉(zhuǎn)ThDHN基因白樺的抗旱耐鹽性分析 55
4.1 ThDHN基因的生物信息學(xué)分析 55
4.2 ThDHN基因在不同逆境下的表達(dá)分析 59
4.2.1 鹽脅迫處理下ThDHN基因在檉柳中的表達(dá) 59
4.2.2 干旱脅迫處理下ThDHN基因在檉柳中的表達(dá) 59
4.2.3 冷脅迫處理下ThDHN基因在檉柳中的表達(dá) 60
4.2.4 重金屬鎘脅迫處理下ThDHN基因在檉柳中的表達(dá) 61
4.2.5 ABA誘導(dǎo)處理下ThDHN基因在檉柳中的表達(dá) 61
4.3 ThDHN基因的白樺遺傳轉(zhuǎn)化研究 62
4.3.1 ThDHN基因植物過表達(dá)載體構(gòu)建 62
4.3.2 轉(zhuǎn)基因植株的獲得 63
4.3.3 轉(zhuǎn)基因株系的分子檢測 63
4.4 轉(zhuǎn)ThDHN基因白樺的抗旱耐鹽性分析 65
4.4.1 轉(zhuǎn)基因白樺耐鹽性分析 65
4.4.2 轉(zhuǎn)基因白樺的抗旱性分析 67
第二篇 白樺材性改良基因工程育種
第5章 白樺BpCCR1基因的功能分析 71
5.1 BpCCR1基因的生物信息學(xué)分析 71
5.1.1 BpCCR1基因序列相似性比對分析 71
5.1.2 BpCCR1基因的氨基酸序列及理化性質(zhì) 71
5.1.3 BpCCR1基因系統(tǒng)進(jìn)化樹 73
5.2 BpCCR1基因的白樺遺傳轉(zhuǎn)化研究 74
5.2.1 植物表達(dá)載體構(gòu)建 74
5.2.2 轉(zhuǎn)基因白樺的獲得 76
5.2.3 轉(zhuǎn)基因株系的分子檢測 77
5.3 轉(zhuǎn)BpCCR1基因白樺的生長特性及木質(zhì)素含量測定 79
5.3.1 轉(zhuǎn)基因白樺的生長特性 79
5.3.2 轉(zhuǎn)基因白樺的木質(zhì)素含量和綜纖維素含量分析 82
5.3.3 轉(zhuǎn)基因白樺的次生木質(zhì)部結(jié)構(gòu)觀察 83
5.4 轉(zhuǎn)BpCCR1基因白樺的轉(zhuǎn)錄組分析 86
5.4.1 RNA質(zhì)量檢測 86
5.4.2 Illumina/Solexa測序質(zhì)量統(tǒng)計(jì) 87
5.4.3 Unigene注釋分析 88
5.4.4 轉(zhuǎn)基因白樺Unigene的差異表達(dá) 90
5.4.5 差異基因的功能分類分析 90
5.4.6 差異基因的Pathway富集分析 92
第三篇 白樺生長發(fā)育相關(guān)基因工程育種
第6章 白樺BpIAA10基因的功能研究 101
6.1 BpAux/IAA家族基因的生物信息學(xué)分析 101
6.1.1 BpIAA家族基因序列分析 101
6.1.2 BpIAA家族基因的染色體定位及基因結(jié)構(gòu)分析 101
6.1.3 BpIAA蛋白家族的結(jié)構(gòu)及進(jìn)化關(guān)系 104
6.2 BpAux/IAA家族基因在白樺不同組織器官表達(dá)特性 106
6.2.1 不同倍性白樺中20條BpIAA基因的時序表達(dá)特性 106
6.2.2 四倍體白樺和二倍體白樺中內(nèi)源激素IAA測定 107
6.3 BpIAA10啟動子功能研究 108
6.3.1 BpIAA10啟動子序列分析 108
6.3.2 BpIAA10啟動子克隆、載體構(gòu)建及遺傳轉(zhuǎn)化 109
6.3.3 白樺BpIAA10基因啟動子的表達(dá)特性 109
6.4 BpIAA10基因的白樺遺傳轉(zhuǎn)化研究 113
6.4.1 BpIAA10基因克隆及植物表達(dá)載體構(gòu)建 113
6.4.2 白樺BpIAA10轉(zhuǎn)錄因子的亞細(xì)胞定位 115
6.4.3 轉(zhuǎn)基因植株的獲得 116
6.4.4 轉(zhuǎn)基因株系的分子檢測 117
6.5 BpIAA10基因的功能研究 119
6.5.1 BpIAA10基因影響白樺頂端幼葉的發(fā)育 119
6.5.2 BpIAA10基因影響白樺休眠芽形成 126
6.5.3 BpIAA10基因參與調(diào)控白樺不定根發(fā)育 132
6.5.4 BpIAA10基因參與白樺氣孔發(fā)育 134
6.5.5 BpIAA10基因參與白樺高生長 134
6.5.6 BpIAA10基因影響白樺功能葉基頂軸方向發(fā)育 136
6.6 酵母單雜交和酵母雙雜交篩選BpIAA10啟動子/BpIAA10轉(zhuǎn)錄因子的互作蛋白 137
6.6.1 白樺cDNA文庫的構(gòu)建及質(zhì)量檢測 137
6.6.2 酵母單雜交篩選BpIAA10基因的上游調(diào)控因子 139
6.6.3 植物細(xì)胞中驗(yàn)證酵母單雜交篩選結(jié)果 141
6.6.4 BpIAA10互作蛋白的篩選 142
6.6.5 雙分子熒光互補(bǔ)（BiFC）在植物細(xì)胞內(nèi)驗(yàn)證候選蛋白的互作 144
第7章 白樺BpGH3.5基因的功能研究 148
7.1 白樺BpGH3.5基因的生物信息學(xué)分析 148
7.2 BpGH3.5基因在白樺不同組織器官表達(dá)特性 151
7.2.1 組織表達(dá)特異性分析 151
7.2.2 激素及非生物脅迫誘導(dǎo)表達(dá)分析 152
7.3 BpGH3.5啟動子的表達(dá)特性 152
7.3.1 BpGH3.5啟動子序列克隆 152
7.3.2 BpGH3.5啟動子序列分析 152
7.3.3 BpGH3.5基因啟動子驅(qū)動GUS的表達(dá)分析 154
7.4 BpGH3.5基因的白樺遺傳轉(zhuǎn)化研究 155
7.4.1 植物過表達(dá)和抑制表達(dá)載體的構(gòu)建 155
7.4.2 轉(zhuǎn)基因植株的獲得 156
7.4.3 轉(zhuǎn)基因株系的分子檢測 157
7.5 白樺GH3.5的功能研究 158
7.5.1 轉(zhuǎn)基因白樺的苗高、地徑調(diào)查 158
7.5.2 轉(zhuǎn)基因白樺生長情況分析 159
7.5.3 轉(zhuǎn)基因白樺的抗旱性分析 165
7.6 轉(zhuǎn)GH3.5基因白樺的轉(zhuǎn)錄組分析 166
7.6.1 Illumina/Solexa測序質(zhì)量統(tǒng)計(jì) 166
7.6.2 Unigene注釋分析 166
7.6.3 差異Unigene的確定及功能分類 168
7.6.4 差異Unigene分析 172
7.6.5 RNA-seq結(jié)果的驗(yàn)證 176
第8章 白樺BpPIN基因的功能研究 178
8.1 白樺BpPIN基因的生物信息學(xué)分析 178
8.1.1 構(gòu)建BpPIN家族進(jìn)化樹 178
8.1.2 BpPIN基因理化性質(zhì)分析 178
8.1.3 保守結(jié)構(gòu)域分析 181
8.1.4 跨膜結(jié)構(gòu)域分析 181
8.2 BpPIN基因在白樺不同組織器官表達(dá)特性 182
8.2.1 BpPIN基因在白樺葉片不同組織部位中的表達(dá)特性 182
8.2.2 BpPIN基因在白樺不同組織器官中的表達(dá)特性 183
8.2.3 IAA含量與BpPIN表達(dá)的相關(guān)性分析 184
8.3 BpPIN1、BpPIN3、BpPIN5啟動子克隆及遺傳轉(zhuǎn)化 187
8.3.1 pro-BpPIN:: GUS表達(dá)載體構(gòu)建 187
8.3.2 轉(zhuǎn)BpPIN啟動子白樺的獲得 189
8.3.3 轉(zhuǎn)BpPIN啟動子白樺的GUS染色 191
8.3.4 pro-BpPIN3:: GUS白樺對IAA及TIBA的應(yīng)答 191
8.4 BpPIN3基因的白樺遺傳轉(zhuǎn)化研究 192
8.4.1 BpPIN3基因的獲得與分析 192
8.4.2 植物表達(dá)載體的獲得 192
8.4.3 轉(zhuǎn)基因植株的獲得 195
8.4.4 轉(zhuǎn)基因株系的分子檢測 196
8.5 轉(zhuǎn)PIN3基因白樺的功能分析 197
8.5.1 轉(zhuǎn)基因白樺的苗高、地徑比較 197
8.5.2 轉(zhuǎn)基因白樺葉型指數(shù)比較 197
8.5.3 轉(zhuǎn)基因白樺根生長特征比較 199
第9章 白樺BpCUC2基因的功能研究 201
9.1 BpCUC2啟動子的表達(dá)分析 201
9.1.1 BpCUC2基因啟動子的獲得 201
9.1.2 Pro-CUC2:: LUC載體的構(gòu)建 201
9.1.3 轉(zhuǎn)Pro-CUC2:: LUC白樺的獲得及分子檢測 202
9.1.4 Pro-CUC2驅(qū)動的LUC表達(dá)特性 202
9.1.5 轉(zhuǎn)Pro-CUC2:: LUC白樺對激素的應(yīng)答分析 204
9.1.6 生長素響應(yīng)元件的上游調(diào)控基因的獲得 205
9.2 BpCUC2基因的生物信息學(xué)分析 210
9.2.1 BpCUC2基因的獲得 210
9.2.2 BpCUC